Original Title: Sugarcane Tissue Culture : I. Influences of Growth regulators on Tissue Growth and Development
Source: li01.tci-thaijo.org
Disclaimer: Summary generated by AI based on the provided document. Please refer to the original paper for full scientific accuracy.

ការបណ្តុះជាលិកាអំពៅ៖ I. ឥទ្ធិពលនៃសារធាតុនិយតករកំណើនទៅលើការលូតលាស់ និងការអភិវឌ្ឍនៃជាលិកា

ចំណងជើងដើម៖ Sugarcane Tissue Culture : I. Influences of Growth regulators on Tissue Growth and Development

អ្នកនិពន្ធ៖ Paiboolya Gravinlertvatana, Boonthuang Bhocharoen, Tanong Pornpradapkiat, Uthai Jaranasri

ឆ្នាំបោះពុម្ព៖ 1981, Agriculture and Natural Resources

វិស័យសិក្សា៖ Agriculture

១. សេចក្តីសង្ខេបប្រតិបត្តិ (Executive Summary)

បញ្ហា (The Problem)៖ ការសិក្សានេះដោះស្រាយបញ្ហានៃការស្វែងរកលក្ខខណ្ឌដ៏ប្រសើរបំផុត រួមទាំងប្រភេទ និងកម្រិតនៃសារធាតុនិយតករកំណើន (Growth regulators) និងសារធាតុចិញ្ចឹម សម្រាប់ការបណ្តុះជាលិកាអំពៅឱ្យទទួលបានជោគជ័យ។

វិធីសាស្ត្រ (The Methodology)៖ អ្នកស្រាវជ្រាវបានធ្វើការបណ្តុះចុងពន្លក ភ្នែកចំហៀង និងស្លឹកខ្ចីរបស់អំពៅនៅលើមជ្ឈដ្ឋាន Murashige and Skoog (MS) ដោយបន្ថែមសារធាតុចិញ្ចឹម និងអរម៉ូនផ្សេងៗដើម្បីតាមដានការលូតលាស់។

លទ្ធផលសំខាន់ៗ (The Verdict)៖

២. ការវិភាគលើប្រសិទ្ធភាព និងដែនកំណត់ (Performance & Constraints)

វិធីសាស្ត្រ (Method) គុណសម្បត្តិ (Pros) គុណវិបត្តិ (Cons) លទ្ធផលគន្លឹះ (Key Result)
MS + 3 ppm 2,4-D + 10% Coconut Water
មជ្ឈដ្ឋាន MS ជាមួយ 2,4-D ៣ ppm និងទឹកដូង ១០%
ជំរុញការបង្កើតកាលុស (Callus) និងពន្លកបានយ៉ាងល្អប្រសើរ ជាពិសេសផ្តល់ទិន្នផលខ្ពស់ជាងកម្រិត 2,4-D ត្រឹម ១ ppm។ ត្រូវការការប្រើប្រាស់ទឹកដូងខ្ចី ដែលគុណភាព និងសារធាតុចិញ្ចឹមអាចប្រែប្រួលទៅតាមអាយុកាល និងប្រភពនៃផ្លែដូង។ បង្កើតកាលុសនិងពន្លកបានកម្រិតអតិបរមា (+++) សម្រាប់ពូជអំពៅ F140 និង F156។
MS + 3 ppm 2,4-D + 0.1 ppm Kinetin
មជ្ឈដ្ឋាន MS ជាមួយ 2,4-D ៣ ppm និង Kinetin ០.១ ppm
ប្រើប្រាស់សារធាតុគីមីសុទ្ធ (Kinetin) ដែលងាយស្រួលគ្រប់គ្រងកម្រិតស្តង់ដារជាងការប្រើប្រាស់ទឹកដូងធម្មជាតិ។ ការលូតលាស់និងការបង្កើតកាលុសមានកម្រិតទាបជាងការប្រើទឹកដូងធម្មជាតិ (10% CW)។ ជំរុញការបង្កើតកាលុស និងពន្លកបានក្នុងកម្រិតមធ្យម (+ ទៅ ++) ប៉ុន្តែមិនសូវមានប្រសិទ្ធភាពស្មើទឹកដូង។
MS + 1 ppm IAA (replacing 2,4-D)
មជ្ឈដ្ឋាន MS ដោយប្រើ IAA ១ ppm ជំនួស 2,4-D
ជាការសាកល្បងប្រើប្រាស់អរម៉ូនប្រភេទ Auxin មួយទៀតដើម្បីស្វែងរកជម្រើសជំនួស។ អរម៉ូន IAA មិនមានសមត្ថភាពគ្រប់គ្រាន់ក្នុងការជំរុញកាលុសក្នុងជាលិកាអំពៅ ទោះបីជាមានបន្ថែមទឹកដូង ឬ Kinetin ក៏ដោយ។ មិនអាចជំរុញការបង្កើតកាលុស និងពន្លកបានទាល់តែសោះ ឫបានតិចតួចបំផុត (-)។
MS + 30 g/L Sucrose (Rooting medium)
មជ្ឈដ្ឋាន MS ជាមួយស្ករស៊ុយក្រូស ៣០ ក្រាម/លីត្រ (សម្រាប់បណ្តុះឫស)
បង្កើនថាមពល (Energy) និងសម្ពាធអូស្មូស (Osmotic pressure) ដែលជួយជំរុញការចេញឫស និងការលូតលាស់របស់កូនអំពៅបានយ៉ាងរឹងមាំ។ ទាមទារការចំណាយបន្ថែមលើបរិមាណស្ករស៊ុយក្រូសច្រើនជាងរូបមន្តទូទៅបន្តិច។ កូនអំពៅ ៥៥% មានការលូតលាស់ឫសល្អ (Good) ប្រវែង ៣.៨-៦.៥ ស.ម ធៀបនឹង ១២.៥% សម្រាប់ការប្រើស្ករត្រឹម ២០ ក្រាម/លីត្រ។

ការចំណាយលើធនធាន (Resource Cost)៖ ការអនុវត្តបច្ចេកទេសនេះទាមទារការវិនិយោគលើមន្ទីរពិសោធន៍បណ្តុះជាលិកា សារធាតុគីមី និងបរិក្ខាររក្សាសីតុណ្ហភាព/ពន្លឺ។

៣. ការពិនិត្យសម្រាប់បរិបទកម្ពុជា/អាស៊ីអាគ្នេយ៍

ភាពលំអៀងនៃទិន្នន័យ (Data Bias)៖

ការសិក្សានេះត្រូវបានធ្វើឡើងនៅក្នុងប្រទេសថៃ ដោយប្រើប្រាស់ពូជអំពៅជាក់លាក់ចំនួន ៣ (F140, F156, និង Q83) ដែលបង្ហាញថាពូជខុសគ្នាមានការឆ្លើយតបខុសគ្នា (ឧទាហរណ៍ ពូជ Q83 មានការឆ្លើយតបខ្សោយជាងគេ)។ សម្រាប់ប្រទេសកម្ពុជា ដែលមានប្រើប្រាស់ពូជអំពៅក្នុងស្រុក ឬពូជនាំចូលផ្សេងៗ ការអនុវត្តរូបមន្តនេះតម្រូវឱ្យមានការធ្វើតេស្តសាកល្បងកែតម្រូវឡើងវិញ ដើម្បីធានាបាននូវប្រសិទ្ធភាពខ្ពស់បំផុត។

លទ្ធភាពនៃការអនុវត្ត (Applicability)៖

បច្ចេកទេសនេះមានសារៈសំខាន់ និងអាចយកមកអនុវត្តបានយ៉ាងមានប្រសិទ្ធភាពសម្រាប់ការផលិតកូនអំពៅស្អាតគ្មានជំងឺ នៅកម្ពុជា។

សរុបមក ការបណ្តុះជាលិកាដោយប្រើប្រាស់ 2,4-D រួមជាមួយទឹកដូងខ្ចី និងស៊ុយក្រូស ៣០ ក្រាម/លីត្រ គឺជាជម្រើសដ៏សន្សំសំចៃ និងមានសក្តានុពលខ្ពស់ក្នុងការជួយលើកស្ទួយខ្សែច្រវាក់ផលិតកម្មអំពៅនៅកម្ពុជា។

៤. ផែនការសកម្មភាពសម្រាប់និស្សិត (Actionable Roadmap)

ដើម្បីអនុវត្តតាមការសិក្សានេះ និស្សិតគួរអនុវត្តតាមជំហានខាងក្រោម៖

  1. ការជ្រើសរើស និងការសម្លាប់មេរោគលើជាលិកា (Sterilization): កាត់យកភ្នែកចំហៀង ចុងពន្លក ឬស្លឹកខ្ចីអំពៅ រួចយកទៅត្រាំសម្លាប់មេរោគដោយប្រើសូលុយស្យុង Sodium Hypochlorite (NaOCl) 0.525% រយៈពេល ១៥ នាទី បន្ទាប់មកលាងជម្រះដោយទឹកចម្រោះដែលបានសម្លាប់មេរោគរួច។
  2. ការរៀបចំមជ្ឈដ្ឋានបណ្តុះកាលុស (Callus Induction Medium): ផ្សំមជ្ឈដ្ឋាន MS Medium ដោយបន្ថែមអរម៉ូន 2,4-D កម្រិត ៣ ppm, ទឹកដូងខ្ចី ១០% និងស្ករ ២០ ឬ ៣០ ក្រាម/លីត្រ រួចកែតម្រូវ pH ទៅ ៥.៨ មុននឹងយកទៅចំហុយក្នុង Autoclave
  3. ការបណ្តុះ និងការតាមដានការលូតលាស់កាលុស: ដាក់ដបបណ្តុះជាលិកានៅក្នុងបន្ទប់ពិសោធន៍ដែលមានសីតុណ្ហភាព ២៧-៣០ អង្សាសេ និងផ្តល់ពន្លឺប្រមាណ ១២០ foot-candle ដោយប្រើអំពូល Fluorescent Lamp ហើយតាមដានទំហំ និងចំនួនកាលុសជាប្រចាំ។
  4. ការប្តូរមជ្ឈដ្ឋានសម្រាប់បណ្តុះឫស (Rooting Stage): នៅពេលកូនពន្លកដុះលូតលាស់ ត្រូវប្តូរកូនអំពៅទៅកាន់មជ្ឈដ្ឋាន MS Medium ថ្មី ដែលមានផ្ទុកស្ករស៊ុយក្រូសកម្រិត ៣០ ក្រាម/លីត្រ (ដោយគ្មាន 2,4-D) ដើម្បីជំរុញឱ្យការលូតលាស់ឫសបានរឹងមាំល្អ។
  5. ការធ្វើតេស្តបន្សាំជាមួយពូជអំពៅក្នុងស្រុក (Acclimatization & Variety Test): ធ្វើការសាកល្បងរូបមន្តនេះជាមួយពូជអំពៅនៅកម្ពុជា ដោយកត់ត្រាអត្រានៃការបង្កើតកាលុស។ ប្រសិនបើពូជខ្លះឆ្លើយតបខ្សោយ អាចសាកល្បងកែប្រែកម្រិត 2,4-D ឬបន្ថែម Kinetin 0.1 ppm ជាជម្រើសជំនួស។

៥. វាក្យសព្ទបច្ចេកទេស (Technical Glossary)

ពាក្យបច្ចេកទេស ការពន្យល់ជាខេមរភាសា (Khmer Explanation) និយមន័យសាមញ្ញ (Simple Definition)
Tissue Culture (ការបណ្តុះជាលិកា) គឺជាបច្ចេកទេសនៃការកាត់យកផ្នែកតូចមួយរបស់រុក្ខជាតិ (ដូចជាចុងពន្លក ភ្នែក ឬស្លឹក) ទៅបណ្តុះនិងចិញ្ចឹមនៅក្នុងមជ្ឈដ្ឋានសិប្បនិម្មិតដែលមានសារធាតុចិញ្ចឹមគ្រប់គ្រាន់ និងស្ថិតក្នុងលក្ខខណ្ឌគ្មានមេរោគ ដើម្បីបង្កើតជារុក្ខជាតិថ្មីទាំងមូល។ ដូចជាការយកកោសិកាមួយដុំតូចរបស់រុក្ខជាតិទៅចិញ្ចឹមក្នុងកែវ ដើម្បីឱ្យវាដុះបំបែកជាកូនរុក្ខជាតិថ្មីរាប់ពាន់ដើមដោយមិនបាច់ប្រើគ្រាប់ពូជ។
Callus / Calli (កាលុស ឬ ដុំកោសិកា) ជាបណ្តុំកោសិការុក្ខជាតិដែលមិនទាន់មានរូបរាងច្បាស់លាស់ (មិនទាន់ក្លាយជាស្លឹក ឫស ឬដើម) ដែលកើតឡើងជាការឆ្លើយតបទៅនឹងរបួស ឬការប្រើប្រាស់អរម៉ូនលូតលាស់នៅក្នុងការបណ្តុះជាលិកា ដើម្បីត្រៀមប្រែក្លាយទៅជាសរីរាង្គផ្សេងៗ។ ដូចជាដុំសាច់ខ្ចីដែលទើបតែដុះនៅពេលយើងមុតដៃ ដែលជាកោសិកាថ្មីត្រៀមខ្លួនប្រែក្លាយទៅជាជាលិកាផ្សេងៗទៀតរបស់រុក្ខជាតិ។
Growth Regulators (សារធាតុនិយតករកំណើន ឬ អរម៉ូនរុក្ខជាតិ) ជាសារធាតុគីមី ឬអរម៉ូន (ដូចជា 2,4-D, Kinetin, IAA) ដែលត្រូវបានប្រើក្នុងកម្រិតតិចតួចបំផុត ដើម្បីគ្រប់គ្រង និងជំរុញប្រតិកម្មផ្សេងៗដូចជាការបំបែកកោសិកា ឬការបញ្ជាឱ្យរុក្ខជាតិបង្កើតឫសនិងពន្លក។ ដូចជាវីតាមីន ឬថ្នាំបំប៉នដែលយើងឱ្យរុក្ខជាតិផឹក ដើម្បីបញ្ជាវាឱ្យប្រញាប់ដុះឫស ឬចេញពន្លកទៅតាមតម្រូវការរបស់យើង។
Murashige and Skoog (MS) medium (មជ្ឈដ្ឋាន MS) ជារូបមន្តមជ្ឈដ្ឋានស្តង់ដារដ៏ពេញនិយមបំផុត ដែលមានផ្ទុកទៅដោយសារធាតុចិញ្ចឹមចាំបាច់ (ម៉ាក្រូ និងមីក្រូធាតុ) និងវីតាមីន សម្រាប់ប្រើប្រាស់ក្នុងការចិញ្ចឹម និងបណ្តុះជាលិការុក្ខជាតិនៅក្នុងមន្ទីរពិសោធន៍។ ដូចជារូបមន្តទឹកដោះគោម្សៅសម្រាប់ទារក ដែលមានបូកបញ្ចូលនូវសារធាតុចិញ្ចឹមគ្រប់យ៉ាង ដែលកោសិការុក្ខជាតិត្រូវការដើម្បីធំធាត់លូតលាស់បាន។
2,4-D (2,4-Dichlorophenoxyacetic acid) ជាប្រភេទអរម៉ូនរុក្ខជាតិសំយោគក្នុងក្រុម Auxin ដែលជារឿយៗត្រូវបានគេប្រើក្នុងកម្រិតទាបនៅក្នុងការបណ្តុះជាលិកា ដើម្បីជំរុញឱ្យកោសិការុក្ខជាតិបំបែកខ្លួន និងបង្កើតជាកាលុស (Callus) ដោយមិនឱ្យវាលូតលាស់ជាស្លឹកឬដើមឡើយ។ ដូចជាកុងតាក់បញ្ជាដែលប្រាប់កោសិការុក្ខជាតិឱ្យឈប់លូតលាស់ជាស្លឹក រួចងាកមកបំបែកខ្លួនបង្កើតជាដុំកោសិកាថ្មីៗរាប់លានជំនួសវិញ។
Kinetin (អរម៉ូនគីនេទីន) ជាប្រភេទអរម៉ូនរុក្ខជាតិក្នុងក្រុម Cytokinin ដែលមានតួនាទីយ៉ាងសំខាន់ក្នុងការជំរុញការបំបែកកោសិកា និងជួយជំរុញការបង្កើតពន្លកថ្មីៗចេញពីកាលុសនៅក្នុងការបណ្តុះជាលិកា។ ដូចជាមេបញ្ជាការដែលបញ្ជាឱ្យដុំកោសិកា (Callus) ចាប់ផ្តើមបំបែកខ្លួន និងដុះចេញជាកូនពន្លកតូចៗ។
Osmotic pressure (សម្ពាធអូស្មូស) គឺជាសម្ពាធដែលកើតឡើងដោយសារកំហាប់នៃសារធាតុរំលាយ (ដូចជាបរិមាណស្ករស៊ុយក្រូស) នៅក្នុងមជ្ឈដ្ឋាន ដែលមានឥទ្ធិពលទៅលើសមត្ថភាពរបស់កោសិការុក្ខជាតិក្នុងការស្រូបយកទឹក និងអាចជួយជំរុញដល់ការដុះឫស។ ដូចជាកម្លាំងឆក់ដែលទាញទឹកពីកន្លែងសាបទៅកន្លែងប្រៃ ដែលកម្លាំងនេះជួយជំរុញឱ្យកូនរុក្ខជាតិប្រឹងបញ្ចេញឫសវែងៗដើម្បីស្រូបទឹកបន្ថែម។
Autoclave (ម៉ាស៊ីនចំហុយសម្លាប់មេរោគដោយសម្ពាធ) ជាឧបករណ៍សម្រាប់ប្រើប្រាស់កម្តៅនិងសម្ពាធខ្ពស់ (១២១ អង្សាសេ និង ១៥ ផោន/អ៊ីញការ៉េ) ក្នុងរយៈពេលកំណត់ណាមួយ ដើម្បីសម្លាប់មេរោគ បាក់តេរី និងផ្សិតទាំងអស់ដែលមាននៅក្នុងមជ្ឈដ្ឋានបណ្តុះជាលិកា។ ដូចជាឆ្នាំងសំពាធស្ងោរស៊ុបខ្នាតធំ ប៉ុន្តែគេប្រើវាសម្រាប់ស្ងោរសម្លាប់មេរោគលើឧបករណ៍ពេទ្យឬដបពិសោធន៍ ដើម្បីឱ្យស្អាតគ្មានមេរោគ១០០%។

៦. ប្រធានបទពាក់ព័ន្ធ (Further Reading)

អត្ថបទដែលបានបោះពុម្ពនៅលើ KhmerResearch ដែលទាក់ទងនឹងប្រធានបទនេះ៖

ប្រធានបទ និងសំណួរស្រាវជ្រាវដែលទាក់ទងនឹងឯកសារនេះ ដែលអ្នកអាចស្វែងរកបន្ថែម៖