Original Title: Insecticide Resistance of the Green Leafhopper, Nephotettix cincticeps, to Systemic Insecticides by “Parafilm Test”: a Simple Method to Evaluate the Efficiency of the Insecticide
Source: doi.org/10.14456/thaidoa-agres.2003.20
Disclaimer: Summary generated by AI based on the provided document. Please refer to the original paper for full scientific accuracy.

ភាពស៊ាំនឹងថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតរបស់សត្វមមាចខៀវ Nephotettix cincticeps ទៅនឹងថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតជាប្រព័ន្ធតាមរយៈ 'ការធ្វើតេស្ត Parafilm'៖ វិធីសាស្ត្រងាយៗដើម្បីវាយតម្លៃប្រសិទ្ធភាពរបស់ថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិត

ចំណងជើងដើម៖ Insecticide Resistance of the Green Leafhopper, Nephotettix cincticeps, to Systemic Insecticides by “Parafilm Test”: a Simple Method to Evaluate the Efficiency of the Insecticide

អ្នកនិពន្ធ៖ Jirapong Jairin (Ubon Ratchathani Rice Research Centre), Nobuki Kojima (Tsukuba International Centre), Toru Nagata (Ibaraki University)

ឆ្នាំបោះពុម្ព៖ 2003 Thai Agricultural Research Journal

វិស័យសិក្សា៖ Entomology

១. សេចក្តីសង្ខេបប្រតិបត្តិ (Executive Summary)

បញ្ហា (The Problem)៖ ការសិក្សានេះដោះស្រាយបញ្ហាភាពស៊ាំនឹងថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតរបស់សត្វមមាចខៀវ (Nephotettix cincticeps) ដែលជាភ្នាក់ងារចម្លងមេរោគដ៏កាចសាហាវដល់ដំណាំស្រូវនៅអាស៊ី។ អ្នកស្រាវជ្រាវចាំបាច់ត្រូវមានវិធីសាស្ត្រងាយស្រួលដើម្បីវាយតម្លៃទាំងអត្រាស្លាប់ និងការទប់ស្កាត់ការស៊ីចំណីរបស់សត្វល្អិតទាំងនេះ។

វិធីសាស្ត្រ (The Methodology)៖ ការស្រាវជ្រាវនេះបានប្រើប្រាស់វិធីសាស្ត្រធ្វើតេស្តតាមរយៈភ្នាសសិប្បនិម្មិតដើម្បីវាយតម្លៃប្រសិទ្ធភាពនៃថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតជាប្រព័ន្ធចំនួនបួនប្រភេទ លើសត្វមមាចខៀវបីកម្រិតភាពស៊ាំខុសៗគ្នា។

លទ្ធផលសំខាន់ៗ (The Verdict)៖

២. ការវិភាគលើប្រសិទ្ធភាព និងដែនកំណត់ (Performance & Constraints)

វិធីសាស្ត្រ (Method) គុណសម្បត្តិ (Pros) គុណវិបត្តិ (Cons) លទ្ធផលគន្លឹះ (Key Result)
Parafilm Test
ការធ្វើតេស្តតាមរយៈបន្ទះ Parafilm
ងាយស្រួល ឆាប់រហ័ស និងអាចវាស់ស្ទង់ទាំងអត្រាស្លាប់ (LC50) និងអត្រាទប់ស្កាត់ការស៊ីចំណី (FI50) របស់ថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតជាប្រព័ន្ធបានក្នុងពេលតែមួយ។ តម្រូវឱ្យមានការថ្លឹងទម្ងន់ទឹកដម (honeydew) យ៉ាងសុក្រឹតដោយប្រើជញ្ជីងកម្រិតខ្ពស់ និងការប្រើប្រាស់ឧស្ម័ន CO2 ដើម្បីសន្លប់សត្វល្អិតដោយប្រុងប្រយ័ត្ន។ អាចរកឃើញថា Imidacloprid ទប់ស្កាត់ការស៊ីចំណីបានល្អបំផុតនៅកម្រិតកំហាប់ទាប (0.001-0.003 ppm) សម្រាប់គ្រប់ពូជសត្វមមាចខៀវ។
Conventional Topical Application / Acetylcholinesterase Sensitivity Method
ការលាបថ្នាំលើស្បែកសត្វល្អិតដោយផ្ទាល់ / ការធ្វើតេស្តភាពរសើបនៃអង់ស៊ីម AChE
ជាវិធីសាស្ត្រទូទៅដែលត្រូវបានប្រើប្រាស់យ៉ាងទូលំទូលាយ និងមានស្តង់ដារសម្រាប់ការវាយតម្លៃការពុលនៃថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតប្រភេទប៉ះផ្ទាល់។ មិនអាចវាយតម្លៃអត្រានៃការស៊ីចំណី ឬប្រសិទ្ធភាពទប់ស្កាត់ការស៊ីចំណីរបស់ថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតប្រភេទជាប្រព័ន្ធ (Systemic insecticides) បានទេ។ មិនអាចបង្ហាញពីសកម្មភាពទប់ស្កាត់ការស៊ីចំណី (Feeding inhibition) ដែលមានសារៈសំខាន់ក្នុងការទប់ស្កាត់ការចម្លងវីរុសបានឡើយ។

ការចំណាយលើធនធាន (Resource Cost)៖ ការអនុវត្តវិធីសាស្ត្រនេះទាមទារសម្ភារៈមន្ទីរពិសោធន៍កម្រិតមធ្យម ប៉ុន្តែចាំបាច់ត្រូវមានជញ្ជីងអេឡិចត្រូនិចដែលមានភាពសុក្រឹតខ្ពស់បំផុតដើម្បីថ្លឹងទឹកដមសត្វល្អិត។

៣. ការពិនិត្យសម្រាប់បរិបទកម្ពុជា/អាស៊ីអាគ្នេយ៍

ភាពលំអៀងនៃទិន្នន័យ (Data Bias)៖

ការសិក្សានេះត្រូវបានធ្វើឡើងដោយប្រើប្រាស់សត្វមមាចខៀវ (Nephotettix cincticeps) ដែលប្រមូលបានពីតំបន់ចំនួនបីនៅក្នុងប្រទេសជប៉ុន (Taniyama, Tsukuba, Natori) ដោយប្រើពូជស្រូវជប៉ុន Akitakomachi។ លទ្ធផលនេះឆ្លុះបញ្ចាំងពីភាពស៊ាំរបស់សត្វល្អិតនៅក្នុងបរិបទប្រទេសជប៉ុន។ សម្រាប់ប្រទេសកម្ពុជា កម្រិតនៃភាពស៊ាំ ប្រភេទពូជសត្វល្អិតចង្រៃ និងពូជស្រូវមានលក្ខណៈខុសប្លែកពីគ្នា ដូច្នេះការធ្វើតេស្តនេះចាំបាច់ត្រូវអនុវត្តឡើងវិញជាមួយសត្វល្អិត និងពូជស្រូវក្នុងស្រុក។

លទ្ធភាពនៃការអនុវត្ត (Applicability)៖

វិធីសាស្ត្រ "Parafilm Test" នេះមានសក្តានុពលខ្ពស់ និងអាចយកមកអនុវត្តបានយ៉ាងល្អសម្រាប់ការស្រាវជ្រាវកសិកម្មនៅកម្ពុជា ដើម្បីការពារដំណាំស្រូវ។

ការប្រើប្រាស់វិធីសាស្ត្រនេះនឹងជួយកម្ពុជាក្នុងការវាយតម្លៃប្រសិទ្ធភាពថ្នាំកសិកម្មបានត្រឹមត្រូវ កាត់បន្ថយការប្រើប្រាស់ថ្នាំហួសកម្រិត និងលើកកម្ពស់ការគ្រប់គ្រងសត្វល្អិតចង្រៃតាមបែបសមាហរណកម្ម (IPM) ប្រកបដោយនិរន្តរភាព។

៤. ផែនការសកម្មភាពសម្រាប់និស្សិត (Actionable Roadmap)

ដើម្បីអនុវត្តតាមការសិក្សានេះ និស្សិតគួរអនុវត្តតាមជំហានខាងក្រោម៖

  1. រៀបចំកន្លែងចិញ្ចឹមសត្វល្អិតមូលដ្ឋាន: ប្រមូលសត្វមមាចខៀវ Nephotettix cincticeps ពីវាលស្រែ និងបង្កើតអាណានិគមសត្វល្អិតនៅក្នុងបន្ទប់ពិសោធន៍ដោយប្រើទ្រុងផ្លាស្ទិក (Plastic cage) រួចគ្រប់គ្រងសីតុណ្ហភាពនៅកម្រិត 25°C លើពូជស្រូវក្នុងស្រុក។
  2. រៀបចំប្រព័ន្ធចំណីសិប្បនិម្មិត និង Parafilm: លាយចំណីសិប្បនិម្មិតដោយប្រើ Sucrose 2.5% និង Tween 60 ជាមួយថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតក្នុងកំហាប់ផ្សេងៗគ្នា។ ដាក់ចំណុះ 0.3 ml នៃចំណីនេះនៅចន្លោះបន្ទះ Parafilm ស្តើងៗពីរជាន់ដើម្បីបង្កើតជាភ្នាស។
  3. អនុវត្តការធ្វើតេស្តជីវសាស្ត្រ (Bioassays): ប្រើឧស្ម័ន CO2 ដើម្បីធ្វើឱ្យសត្វល្អិតសន្លប់ បន្ទាប់មកផ្ទេរសត្វល្អិតញី/ឈ្មោលចំនួន 5 ចូលទៅក្នុងបំពង់ផ្លាស្ទិកនីមួយៗ (Plastic vials) ដែលគ្របដណ្តប់ដោយភ្នាសចំណីដែលបានរៀបចំរួច។
  4. ប្រមូលទិន្នន័យទឹកដម (Honeydew Excretion): បន្ទាប់ពីរយៈពេល 48 ម៉ោង យកសត្វល្អិតចេញ និងថ្លឹងទម្ងន់ទឹកដមដែលសត្វល្អិតបានបញ្ចេញដោយប្រើជញ្ជីង Analytical Balance ដែលមានភាពសុក្រឹត 0.1-mg ដើម្បីគណនាអត្រាធ្លាក់ចុះនៃការស៊ីចំណី។
  5. វិភាគទិន្នន័យតាមបែបស្ថិតិ: ប្រើប្រាស់កម្មវិធីស្ថិតិដូចជា R StudioSPSS ដើម្បីដំណើរការវិភាគ Probit analysis ក្នុងការស្វែងរកតម្លៃកម្រិតថ្នាំសម្លាប់ពាក់កណ្តាល (LC50) និងកម្រិតទប់ស្កាត់ការស៊ីចំណីពាក់កណ្តាល (FI50)។

៥. វាក្យសព្ទបច្ចេកទេស (Technical Glossary)

ពាក្យបច្ចេកទេស ការពន្យល់ជាខេមរភាសា (Khmer Explanation) និយមន័យសាមញ្ញ (Simple Definition)
Systemic Insecticides (ថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតជាប្រព័ន្ធ) ជាប្រភេទថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតដែលត្រូវបានស្រូបយកដោយរុក្ខជាតិ (តាមរយៈឫស ឬស្លឹក) ហើយសាយភាយទៅគ្រប់ជាលិការបស់រុក្ខជាតិ។ សត្វល្អិតនឹងពុលនៅពេលដែលវាជញ្ជក់យកទឹកដមពីរុក្ខជាតិនោះ។ ដូចជាការផឹកថ្នាំដែលជ្រាបចូលពេញសរសៃឈាម ដូច្នេះនៅពេលមូសមកខាំបឺតឈាម មូសនោះនឹងពុលស្លាប់តែម្តង។
Feeding inhibition (ការទប់ស្កាត់ការស៊ីចំណី) ជាសកម្មភាព ឬឥទ្ធិពលនៃសារធាតុគីមីដែលធ្វើឱ្យសត្វល្អិតឈប់ ឬកាត់បន្ថយការជញ្ជក់ចំណីដោយខ្លួនឯង ទោះបីជាវាមិនទាន់ស្លាប់ក៏ដោយ ដែលជាកត្តាដ៏សំខាន់ក្នុងការការពារសត្វល្អិតពីការចម្លងវីរុសទៅរុក្ខជាតិ។ ដូចជាការដាក់ថ្នាំល្វីង ឬថ្នាំប្រឆាំងចំណង់អាហារលើបាយ ដែលធ្វើឱ្យយើងលែងមានអារម្មណ៍ចង់ញ៉ាំវាទៀត។
Sublethal doses (កម្រិតថ្នាំមិនបណ្តាលឱ្យស្លាប់) ជាកម្រិតនៃកំហាប់ថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតដែលទាបខ្លាំង មិនគ្រប់គ្រាន់ដើម្បីសម្លាប់សត្វល្អិតនោះទេ ប៉ុន្តែវាមានឥទ្ធិពលរំខានដល់ប្រព័ន្ធសរសៃប្រសាទ អាកប្បកិរិយា ឬការស៊ីចំណីរបស់វា។ ដូចជាការផឹកស្រាត្រឹមមួយកែវតូច វាមិនធ្វើឱ្យយើងសន្លប់បាត់បង់ស្មារតីទេ តែវាធ្វើឱ្យយើងទន់ដៃទន់ជើង និងវង្វេងវង្វាន់។
LC50 (កំហាប់ថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិតពាក់កណ្តាល / Lethal Concentration 50%) ជាកំហាប់នៃសារធាតុគីមី ឬថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិត ដែលតម្រូវឱ្យមានដើម្បីសម្លាប់ពាក់កណ្តាល (៥០%) នៃចំនួនសត្វល្អិតដែលបានយកមកធ្វើតេស្តក្នុងរយៈពេលកំណត់ណាមួយ។ វាជារង្វាស់ស្តង់ដារនៃកម្រិតភាពពុល។ បើសិនជាមានសត្វល្អិត ១០០ ក្បាល វាគឺជាបរិមាណថ្នាំគីមីដែលត្រូវប្រើប្រាស់ដើម្បីឱ្យសត្វល្អិតពិតជាស្លាប់អស់ ៥០ ក្បាល។
Honeydew excretion (ការបញ្ចេញទឹកដម) ការបញ្ចេញសំណល់រាវដែលមានផ្ទុកជាតិស្ករពីសត្វល្អិត (ដូចជាមមាច) បន្ទាប់ពីវាបានបឺតជញ្ជក់រុក្ខជាតិ ឬចំណីសិប្បនិម្មិត។ ការថ្លឹងទម្ងន់ទឹកដមនេះ គឺជាវិធីសាស្ត្រប្រយោលដើម្បីដឹងពីបរិមាណចំណីដែលវាបានស៊ី។ ដូចជាការវាស់បរិមាណទឹកនោមរបស់អ្នកជំងឺ ដើម្បីតាមដានដឹងថាគាត់បានញ៉ាំទឹកច្រើនប៉ុណ្ណាក្នុងមួយថ្ងៃ។
Parafilm test (ការធ្វើតេស្តដោយប្រើភ្នាស Parafilm) ជាវិធីសាស្ត្រពិសោធន៍ដែលគេប្រើបន្ទះជ័រយឺតសិប្បនិម្មិតស្តើង (Parafilm) មកខ្ចប់សូលុយស្យុងចំណីនិងថ្នាំ ដើម្បីឱ្យសត្វល្អិតយកប្រមោយរបស់វាទម្លុះជញ្ជក់ស៊ី ដែលជាការក្លែងធ្វើដូចជាការជញ្ជក់ជាលិការុក្ខជាតិពិតៗ។ ដូចជាការយកថង់ផ្លាស្ទិកស្តើងទៅខ្ចប់ទឹកដោះគោ រួចឱ្យទារកបឺតតាមទុយោ ដើម្បីធ្វើត្រាប់តាមការបៅដោះម្តាយ។
Probit analysis (ការវិភាគប្រូប៊ីត) ជាវិធីសាស្ត្រគណនាផ្នែកស្ថិតិដែលត្រូវបានប្រើប្រាស់យ៉ាងទូលំទូលាយក្នុងវិស័យជីវវិទ្យា និងពិសវិទ្យា (Toxicology) ដើម្បីវិភាគទិន្នន័យនៃអត្រាស្លាប់របស់សត្វល្អិត ទៅនឹងកម្រិតកំហាប់ថ្នាំផ្សេងៗគ្នា។ ដូចជាការគូសក្រាហ្វិកគណិតវិទ្យាដើម្បីព្យាករណ៍ថា តើសិស្សប៉ុន្មានភាគរយនឹងប្រឡងធ្លាក់ បើសិនជាវិញ្ញាសាកាន់តែពិបាកឡើងៗ។
Behavioristic resistance (ភាពស៊ាំតាមរយៈអាកប្បកិរិយា) សមត្ថភាពរបស់សត្វល្អិតក្នុងការចៀសវាង ឬកាត់បន្ថយការប៉ះពាល់ជាមួយថ្នាំសម្លាប់សត្វល្អិត តាមរយៈការផ្លាស់ប្តូរទម្លាប់ ឬសកម្មភាពរបស់វា ដូចជាការប្តូរទីតាំងរស់នៅ ឬឈប់ស៊ីចំណីត្រង់កន្លែងដែលមានថ្នាំ។ ដូចជាសត្វកណ្តុរដែលរៀនចេះគេចចេញពីអន្ទាក់ ឬមិនព្រមស៊ីនុយដែលមានរោយថ្នាំបំពុល ព្រោះវាដឹងថាមានគ្រោះថ្នាក់។

៦. ប្រធានបទពាក់ព័ន្ធ (Further Reading)

អត្ថបទដែលបានបោះពុម្ពនៅលើ KhmerResearch ដែលទាក់ទងនឹងប្រធានបទនេះ៖

ប្រធានបទ និងសំណួរស្រាវជ្រាវដែលទាក់ទងនឹងឯកសារនេះ ដែលអ្នកអាចស្វែងរកបន្ថែម៖